Известно, что чрезмерное использование пестицидов в сельском
хозяйстве привело не только к нежелательным последствиям для здоровья
человека, но и к появлению многих резистентных штаммов микроорганизмов. В
связи с этим крайне важно идентифицировать новые природные вещества
/соединения с антимикробной активностью [2].
Кориандр посевной (Coriandrum sativum L.), известный с античных
времен, содержит широкий спектр вторичных метаболитов, фитохимический
скрининг которых доказал присутствие алкалоидов, гликозидов, флаваноидов как
в ацетоновых, так и в метанольных экстрактах. При этом оба экстракта проявляют
выраженные антибактериальные и антигрибные активности [3].
Бактерия Erwinia amylovora является возбудителем бактериального
ожога растений для многих видов семейства Rosaceae и представляет собой
глобальную угрозу для производства и комерциализации яблок и груш [6].
Xanthomonas campestris pv. vesicatoria – возбудитель бактериальных пятнистостей
томата (Solanum lycopersicum L.) и перца (Capsicum annuum L.), вызывает также
дефолиацию, некротические и хлоротичные поражения на листьях, стеблях,
плодах и цветках, что в итоге приводит к значительному снижению урожайности
[7].
Грибы родов Fusarium и Drechslera/Bipolaris являются одними из
наиболее вирулентных патогенов на зерновых культурах во всем мире [5], в том
числе и в Республике Молдова [4]. Используемые в настоящее время химические
препараты против данных патогенов весьма нежелательны с токсикологической
точки зрения, в связи с чем возрастает интерес к экологически чистым веществам
природного происхождения с антимикробной активностью.
Эфирное масло кориандра (ЭМК) было получено нами методом
гидродистилляции свежесобранных растений на стадии незрелых семян. Образец
эфирного масла подвергли ГХ-МС анализу, используя
систему Agilent Technologies 7890A. ИК-спектры регистрировали на
спектрометре Spectrum-100FT-IR с использованием метода аттенюированного
полного отражения. 1H и 13C ЯМР спектры снимали в CDCl3 на
спектрометре Bruker Avance DRX 400 (400 МГц). Все химические сдвиги
приведены по шкале δ, в м.д. и относятся к остаточному CHCl3 (δH при 7,26 м.д.)
и к CDCl3 (δC 77,00 м.д.) соответственно.
Для выявления антибактериальной активности эфирного масла кориандра
использовали грамм-отрицательные бактерии – Xanthomonas campestris, Erwinia
amylovora, E. carotovora, антигрибковой активности – мицелиальные виды
Fusarium oxysporum, F. sporotrichiella, Drechslera sorokiniana.
С целью определения минимальных бактерицидных концентраций (МБК)
содержимое пробирок высевали на пептоне и агаре Сабуро в чашках Петри и
помещали в термостат на 24 часа при температуре 35oC. Концентрации ЭМК, при
которых не был отмечен рост микроорганизмов, были определены в качестве
МБК.

Для скрининга антигрибковой активности ЭМК были использованы
концентрации 0,05; 0,01; 0,002% в картофельно-декстрозной среде (Potatoes
Dextrosis Agar). В центре чашки Петри на плотной среде высевали диск с
мицелием гриба диаметром 5 мм, после чего чашки поддерживали при
температуре 23-24°C. Определение роста грибов путем измерения
взаимоперпендикулярных диаметров колоний проводили на 2, 4 и 6-й день.
Плотность мицелия определяли по 3-бальной шкале: 1 – очень
слаборазвитый, 2 – слаборазвитый, 3 – хорошо развитый мицелий. Опыт
проводили в 6-ти повторностях. Полученные данные были обработаны в пакете
программ STATISTICA 7.
Согласно ГХ-МС анализу, были идентифицированы 32 компонента, что
соответствовало их 99,32%-ному составу. Фракция терпенов (26,42%) включала
монотерпеновые углеводороды (3,07%) и их окисленные производные (23,35%).
Наиболее обильной и разнообразной оказалась фракция алифатических
соединений (71,91%), состоящая из алканов (0,57%), насыщенных и
ненасыщенных спиртов (соответственно 4,96% и 15,86%), насыщенных и
ненасыщенных альдегидов (соответственно 8,43% и 42,09%). Выявлено также,
что ЭМК содержит небольшое количество гетероциклических соединений (~1%).
Установлено, что ЭМК имеет довольно высокую бактериальную
активность для изученных штаммов – 0,0035-0,007% (табл. 1).
Таблица 1. Бактериальная активность эфирных масел кориандра

Антибактериальная активность может быть связана с присутствием в
экстракте линалоола, n-деканала, (E)-Dec-2-en-1-ol-a и других компонентов,
вызывающих различные структурные изменения в цитоплазматической мембране
и ионном транспорте в бактериальных клетках [1].
Установлено, что во всех вариантах с ЭМК диаметр колоний гриба D.
sorokiniana был практически на уровне контроля, а грибов F. oxysporum и F.
sporotrichiella – немного выше. Это свидетельствует о том, что ЭМК не
ингибировало линейный рост грибов. Следует, однако, отметить, что ЭМК всегда
вызывало значительное уменьшение плотности колоний грибов, что приводило к
снижению биомассы грибов. Например, в случае гриба F. oxysporum плотность
мицелия была на уровне 0,6...0,9 баллов, F. sporotrichiella var. tricinctum – 0,7...1,0
баллов, D. sorokiniana – 1,1...1,3 баллов на протяжении роста колоний. Отметим,
что в контрольном варианте указанных грибов плотность мицелия была на уровне
3-х баллов. Это является доказательством того, что рост грибов все-таки был
подавлен. По некоторым данным, значительное распространение мицелия по
поверхности субстрата может иметь место на малопитательных средах [8].
Помимо вышеуказанных эффектов, ЭМК вызвало сильное изменение цвета
мицелия. У грибов F. oxysporum и D. sorokiniana отмечено обесцвечивание
мицелия, а у F. sporotrichiella – усиление розово-красного оттенка. При пересеве
грибов с этих вариантов на новую оптимальную питательную среду цвет мицелия
не изменился. Это свидетельствует о том, что ЭМК повлияло на пигментогенез
грибов. Поскольку пигменты мицелия имеют большое значение для адаптации
грибов к неблагоприятным условиям среды, можно предположить, что ЭМК
вызывает снижение их приспособительной способности.

Рис. 1. Влияние эфирного масла кориандра на плотность и цвет мицелия грибов
Библиография.
1. Asgarpanah J. Phytochemistry, pharmacology and medicinal
properties of Coriandrum sativum L. / J. Asgarpanah, N. Kazemivash // African Journal of
Pharmacy and Pharmacology, 2012, 6(31), P. 2340 – 2345.
2. Dayan F. E. Natural products in crop protection / F. E. Dayan, C. L. Cantrell, S. O. Duke //
Bioorganic & Biochemical Chemistry, 2009, 17(12). – P. 4022 – 4034.
3. Freieres I. A. Coriandrum sativum L. (Coriander) Essential Oil: Antifungal Activity and
Mode of Action on Candida spp., and Molecular Targets Affected in Human Whole-
Genome Expression / I. A. Freieres, R. M. Murata, V. F. Furletti // PLoS ONE, 2014, 9(6):
e99086ꞏJune 2014. DOI: 10.1371/journal.pone.0099086
4. Lupascu G. Controlul genetic al caracterelor de rerezistenţă şi productivitate la grâul
comun / G. Lupascu [et al.]. – Chişinău: Tipografia AŞM, 2015. – 176 с. (Рум.)
5. Mielniczuk E. Fungi infecting the roots and stem base of winter rye (Secale cereale L.)
grown in the Lublin region (Poland) / E. Mielniczuk, I. Kiecana, M. Cegiełko // Acta
agrobotanica, 2012, Vol. 65 (3), p. 85-92
6. Piqué N. Virulence Factors of Erwinia amylovora: A Review / N. Pique [et al.] // Int. J.
Mol. Sci., 2015, 16(6), p. 12836–12854.
7. Tamir-Ariel D. Identification of Genes in Xanthomonas campestris pv. vesicatoria Induced
during Its Interaction with Tomato / D. Tamir-Ariel, N. Navon, S. Burdman // Bacteriol.,
2007, 189(17), p. 6359–6371.
8. Билай В. И. Определение роста и биосинтетической активности грибов / В. И. Билай
// Методы экспериментальной микологии. Киев: Наукова думка. 1982. – С. 138 – 164.